Первое сообщение в теме :

"Самое интересное и познавательное в птицеводстве (только информация, без обсуждения) как справочник."
Прошу не комментировать и не обсуждать в этой теме, только как справочник, оставляем интересную и познавательную информацию о птицеводстве.

Вот супер интересно, смотреть всем.

Просто слов нету ,вот это жизнь .

Центрифуга для ощипки кур гусей уток.
Центрифуга для ощипки 3-5 кур, гусей, уток.
Технические характеристики: Время общипки 20-30сек.
Двигатель однофазный 220В, 0,75кВт. Вес 55 кг. Диаметр бака 60см.

на всякий случай чтоб не терять .

Мечта! 20-30 секунд и гусь раздет.

svezam пишет:

Мечта! 20-30 секунд и гусь раздет.

Аппарат чудо.

Не чуть не хуже перепелиного ,совсем на немного уступают .

2011.11.17 11:32:31
Ольга Лаврова
Выращивание индюшат и гусят в клетках (видео)

Не новость, что домашнюю сельскохозяйственную птицу можно выращивать в клеточных батареях или в клетках.

Например, кур можно в течение всего периода жизни держать в клетках. Для перепелов так в основном применяют только клеточное содержание. В основном клеточное содержание птицы применяется на птицефабриках, иногда в крупных фермерских хозяйствах.



Научно доказано, что выращивание птицы в клетках уменьшает расход кормов и несколько сокращает срок откорма. К тому же содержание птицы на сетчатых полах исключает контакт птицы с пометом, что значительно снижает риск возникновения инфекции. Это одна из причин, почему перепела намного меньше болеют в отличие от другой птицы.

Также использование клеточных батарей увеличивает полезную площадь для содержания птицы, так как в клетках плотность посадки птицы увеличивается вдвое.

Применение клеточного содержания не ограничивается только перепелами и курами, в них успешно можно выращивать и более крупную птицу – индеек и гусей.

Мы в своем хозяйстве пришли к этому не так давно. Подтолкнуло к этому в первую очередь нехватка места для птицы. Решили попробовать применить выращивание в клетках. Вернее сказать, подращивание до определенного возраста. Например, индюшат мы содержим в клетках примерно до 40 дней, хотя при выращивании индеек на мясо и правильной организации индеек можно растить в клетках до убойного возраста.

Гусята же содержаться в клетках у нас примерно до 2-3 недель. После молодняк птицы переводится на напольное содержание.

Клеточное выращивание индюшат и гусят мне очень понравилось. На прежней площади получается разместить в 2-3 раза больше птенцов, обогреть помещение проще, падеж значительно сокращается. Да и кормить-поить удобнее.

Клеточные батареи мы делали в четыре яруса. Каркас из деревянных брусков, пол из сварной металлической сетки, стенки и дверки клетки- из мелкой пластиковой сетки. Для кормления птицы снаружи клетки приделан металлический профиль. По всей длине клетки, на каждом ярусе установлена линия ниппельных поилок, которая подсоединяется к емкости для воды. В каждой клетке под сетчатым полом оцинкованные поддоны для сбора помета. Если помет ежедневно убирать, то и неприятного запаха практически не бывает.

Вот видео, как индюшата содержатся в клетках. Индюшатам около 10 дней.

Клеточное содержание индюшат.

Девчата инет не пашет.Пошукайте ПЛИСС как определить пол индюков в сутки.Или уже есть ссылку скинте

Как определить пол цыпленка. (Утенка, гусенка, индюшонка)

Этот, отнюдь не праздный, вопрос волнует многих птицеводов-любителей. Действительно, определение пола у только что вылупившихся из яиц цыплят, индюшат, гусят или утят имеет немаловажное значение. Так, для производства куриных или перепелиных яиц в приусадебных хозяйствах нужно выращивать преимущественно самок яичных пород птицы. Разделение цыплят мясояичных пород по полу в суточном возрасте позволяет в дальнейшем содержать петушков и курочек отдельно и направленно выращивать их для различных целей: курочек — для производства пищевых яиц, а петушков — для получения диетического мяса. Кроме того, рост, развитие и сохранение будущих несушек значительно улучшится, если выращивать их без самцов, которые по своей природе более агрессивны.

Попытки научиться определять пол суточного молодняка предпринимались птицеводами давно. Известны два старинных способа, позволяющие разделить суточных цыплят на курочек и петушков с точностью 60-65%. Если цыпленка держать за загривок, ноги у петушка будут висеть ровно, курочка же приподнимает их и скрючивает пальцы. Согласно другому способу, цыпленка нужно поднять за ноги, при этом петушок будет висеть спокойно, а курочка попытается приподнять голову. Точность этих двух методов можно повысить, если учесть, что у суточных петушков, по сравнению с курочками, более круглая голова, заметнее гребешок, сильнее загнут клюв и более толстые ноги. Да и весят они, в среднем, на 1 -2 грамма больше, чем курочки.

В основу определения пола суточных утят домашней (но не мускусной) утки положены различия в строении нижней гортани. У селезней нижняя часть гортани при входе в грудную клетку расширена и выполняет функцию резонатора. У самок резонатора нет.

В настоящее время в мировом птицеводстве для определения пола суточного молодняка широко применяются два метода — японский и аутосексный.

В основу японского метода положена процедура выявления на внутренней стенке клоаки (со стороны живота) полового бугорка у самца. При определении пола цыпленка выполняют следующие операции: его берут в левую руку и осторожным надавливанием на живот освобождают кишечник от помета, зафиксировав цыпленка в левой руке головой вниз. Большим и указательным пальцами правой руки раскрывают клоаку и после осмотра ее внутренней стенки определяют пол особи.

Половой бугорок петушка похож на половинку крошечного "шарика" размером 1 мм в диаметре. Бугорок плотный, красный и блестящий. От него влево и вправо отходят по одной кожной складке. Типичный признак суточной курочки — наличие на стенке клоаки розовых складок и отсутствие полового бугорка.

Техника распознавания пола у индюшат, утят и гусят, в принципе, та же, что и у цыплят. Основное отличие - у птенцов мясных видов птиц нет необходимости освобождать кишечник от помета. Суточные индюшата-самцы имеют в клоаке два расположенных рядом половых бугорка красноватого цвета. У утят и гусят самцы имеют хорошо выраженный и четко различимый пенис (копулятивный орган) в виде буравчика длиной 1,5-2 мм. Точность определения пола молодняка японским методом 90-98%.

Аутосексный метод проще, так как позволяет определять пол молодняка по окраске или рисунку пухового покрова. В его основу положены скрещивания разных пород птиц, обеспечивающие перекрестное наследование расцветки оперения от отца к дочерям и от матери к сыновьям. Так, например, для получения гибридных цыплят с разной окраской пуха яичного кросса "Ломанн коричневый" проводят скрещивание серебристо-белых кур с золотисто-коричневыми петухами. В потомстве от этого скрещивания все суточные петушки покрыты желто-серебристым, а курочки - золотисто-коричневым пухом. Точность определения пола гибридных цыплят приближается к 100%.

Для получения аутосексных гусят проводят скрещивание серых гусаков любой породы с белыми самками пород виштинес, эмденская, рейнская или итальянская. Все сыновья имеют светло-серую, а дочери — темно-серую окраску пуха.

При скрещивании коричневых мускусных селезней с черными или белыми мускусными утками все потомки мужского пола покрыты черным пухом, тогда как у дочерей окраска пухового покрова коричневая.

При разведении некоторых разновидностей домашних птиц "в чистоте" суточный молодняк различают по окраске пуха. Довольно точно, к примеру, можно определить пол темноокрашенных цыплят породы полосатый плимутрок по форме и величине светлого пятна на затылочной части головы. У петушков пятно крупнее (12-18 мм в диаметре), неправильной формы и нечетко очерчено. У курочек белое пятно четкое, меньше по размеру (диаметр колеблется от 3 до 12 мм) и правильной формы.

Цыплята светло-коричневого леггорна (итальянская куропатчатая) имеют золотисто-коричневую окраску пуха с одной центральной широкой и двумя боковыми узкими темными полосами на спине. У курочек полоса темно-коричневая, четкая, а у петушков — более светлая и расплывчатая. Точность распознавания пола птенцов на основе особенностей рисунка головы и спины колеблется от 80 до 90%.

При чистопородном разведении венгерских белых, рейнских и итальянских гусей пол суточного молодняка также легко определить по окраске пуха. У суточных гусят—самцов пух на спине желтый или светло-серый, а у самочек — серый. Точность сексирования гусят этим способом 97-98%.

Юрий БОНДАРЕНКО

Вот так убирают деформацию шпагатиков у перепелят, да и у др птицы можно...

Борьба с мухами, очень познавательная информация.
ФЛАЙ КЛИН
ИНСЕКТИЦИДОЕ СРЕДСТВО ДЛЯ БОРЬБЫ СО ВЗРОСЛЫМИ ОСОБЯМИ МУХ

ФЛАЙ КЛИН

ФЛАЙ КЛИН - представляет собой высокоэффективный инсектицид длительного действия против мух. Действующее вещество Азаметифос является фосфорорганическим соединением и обладает быстрым инсектицидным эффектом. Благодаря стабильности Азаметифоса, препарат отличается выраженным пролонгированным действием от 4-х до 6-й недель (в зависимости от условий внешней среды). Половой феромон, используемый как аттрактант, привлекает мух на расстоянии, что повышает эффективность препарата.
При соблюдении мер предосторожности, препарат можно применять в присутствии людей и животных.

ПРИМЕНЕНИЕ:
Расчет дозировки: 125 г препарата на 100 м2 площади помещений различных категорий.
• Метод нанесения кистью
Приготовление пасты – 125 г препарата добавить в 125 мл теплой воды. Помешивать до образования однородной пасты, которая наносится кистью на подложки или на стены общей площадью 2,5 м2 – 5 м2 в 15 - 20 местах скопления мух по периметру 100 м2. Рекомендуемая площадь обработки одного участка составляет 0,03 - 0,25 м2
В свинарнике стены обрабатываются не менее чем на 1,5 м, а в коровниках – выше 2 м от уровня пола.
Подложки распределяются в местах, недоступных для животных и птиц.
• Метод спрея
Рабочий раствор готовиться из расчета 125 г на 5 л теплой воды.
При площади пола, равной 100 м2 , таким объемом раствора обрабатывают точечно около 30% поверхности стен в местах скопления мух (подоконники, стены и т.д.). Применяются ручные или автоматические распылители.
В свинарнике стены обрабатываются не менее чем на 1,5 м а в коровниках – выше 2 м от уровня пола.
Препарат наносится на стены в отсутствие животных.

МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ
По лимитирующим показателям токсичности для инсектицидных средств – по зоне острого и подострого биоцидного эффекта – пары средства относятся к 4 классу мало опасных по Классификации степени опасности средств дезинсекции.
Условия хранения и транспортировки: Средство хранят в плотно закупоренных контейнерах в сухих прохладных складских помещениях, вне доступа прямых солнечных лучей и открытого огня, отдельно от кормов, пищевых продуктов, фуража, лекарственных препаратов и в местах, недоступных детям.
Температурный режим транспортирования и хранения средства от -10° С до + 30° С.
Допускается транспортирование всеми видами наземного транспорта в соответствии с правилами перевозки опасных грузов, действующих на данном виде транспорта и гарантирующими сохранность тары и средства.

ПОЛЕЗНАЯ ИНФОРМАЦИЯ:
Популяция мух состоит только на 15% из взрослых особей, а на 85% – ¬из личинок на разных стадиях развития! Данный факт свидетельствует о том, что успешное решение проблем с мухами в животноводстве и птицеводстве требует одновременного применения средств против взрослых особей («адултицидов») и личиночных стадий мух («ларвицидов» – «ЛАРВА КЛИН»).
С целью предупреждения резистентности у мух к инсектициду рекомендуется проводить
ротацию, т.е. своевременное чередование действующих веществ разных химических групп. В зависимости от степени инвазии, длительности сезона и появления первых признаков привыкания популяции мух к используемому препарату предлагается смена средства.
Важную роль при выборе правильного инсектицида играет анализ истории применения препаратов против мух. После длительного использования во время прошлых сезонов одного действующего вещества, входящего в состав того или иного инсектицидного средства, смена препарата является базой успешной ликвидации мух в хозяйствах.
Для гарантирования эффективной борьбы против мух, компания РАБОС предлагает 2 инсектицида против взрослых особей («адултициды» ФЛАЙ КЛИН и МОСКИНА), в основе которых действие 2-х веществ разных химических групп (группа Неоникитиноидов и группа ФОС).

СОСТАВ
Азаметифос - 10 %
Феромон Z-9-трикозен (половой аттрактант)
Сахар (вкусовой аттрактант)

УПАКОВКА: 2 кг

СРОК ГОДНОСТИ: 24 месяца



ЛАРВА КЛИН
Ларвиицидное средство для уничтожения мух и др. видов насекомых

ЛАРВА КЛИН, действующим веществом которого является Циромазин, представляет собой ингибитор роста личинок мух и других насекомых, что дает возможность контролировать численность их популяций. Средство попадает в организм личинки вместе с кормом и тормозит развитие кутикулы, вследствие чего прекращается рост личинок, развивающихся во влажной среде (в навозе, в помете и т.п.), и наступает их гибель.

Привыкания к препарату не наблюдалось в течение 20 лет его присутствия на рынке Европы!
Действие препарата эффективно исключительно во влажной среде, поэтому, использование средства в виде порошка недопустимо.

ПРИМЕНЕНИЕ:
• Метод Полива
Растворить 10 гр. средства в 10 л воды в расчёте на каждые 10 м2 площади. Рабочим раствором равномерно поливают поверхность обрабатываемой площади.
• Метод Распыления
Растворить 10 гр. средства в 1-4 л воды в расчёте на каждые 10 м2 площади и распылить рабочий раствор равномерно на обрабатываемую поверхность.

Препарат применяется в присутствии животных.

Упаковка: 500 г, 2 кг, 25 кг

ДЮРАСИД ИС
Инсектицид в виде концентрата эмульсии, обладающий выраженным "нокдаун-эффектом" и пролонгированным действием.
Является высокоэффективным инсектицидом широкого спектра действия против всех видов вредоносных ползающих и летающих членистоногих (мух, слепней, жуков, комаров, муравьёв, синантропных тараканов, клопов, блох, чешуйниц, ос, шершней, клещей, домовых пауков и др.), применяется вне и внутри помещений.
Препаратом обрабатываются сельскохозяйственные постройки, животноводческие и птицеводческие хозяйства, складские помещения разного типа/назначения, свалки мусора, станции очистки сточных вод, рекреационные зоны, озелененные территории для проведения противомоскитных мероприятий и другие места расплода и развития вредоносных членистоногих.
В результате применения средства погибают все имеющиеся в наличии насекомые и предотвращается развитие дальнейшей инвазии на срок не менее 2 - 4 недель.
Препарат характеризуется высокой эффективностью в самых низких дозах, что значительно снижает расходы при обработке. Благодаря своему химическому составу, низкой концентрации эмульгаторов и отсутствию растворителей, ДЮРАСИД ИС является экологически безвредным. Препарат не имеет запаха и не оставляет пятен на обработанных поверхностях.

ПРИМЕНЕНИЕ:
Метод Спрея
Метод «Холодного тумана»
Упаковка: 25 мл, 10 мл 500 мл, 5 л

Если мускусных утят вывод,утка то срок инкубации может варьироваться от 33 дней до 40. Также утка может оставлять яйца на 30 - 4 часа, не чего страшного с ними не случиться.

Куры породы БЕНТАМКА.
Происходят бентамки из Японии. Эта порода имеет самое большое число разновидностей среди декоративных кур. По цвету оперения бентамок разделяют на ситцевых, ореховых, палевых и черных.
Их отличают миниатюрные размеры. Гребень листовидный. Оперение плотное. Грудь выпуклая, крылья широкие, длинные, касаются земли, ноги не оперены, короткие. Маховые и рулевые перья длинные. У петуха туловище приподнято. Окраска оперения может быть различной. Петухи очень подвижны и воинственны. Куры энергичные, прекрасные наседки. Бентамки быстро растут, отличаются выносливостью.
Птица является носителем гена карликовости, обуславливающего их небольшие размеры.

Живая масса кур всего 0,5 кг, а петухов 0,9 кг. Яйценоскость за первый год продуктивности 130 яиц. Масса яйца не превышает 45 г. Куры начинают нестись в 5,5-месячном возрасте, сильно развит инстинкт насиживания.
Птицу разводят в приусадебных хозяйствах, используют несушек в качестве «домашнего инкубатора», подкладывая по 10—12 куриных яиц для вывода молодняка.
У курочек бентамок очень силен инстинкт насиживания яиц, вывода потомства. Птицеводы этим пользуются и подкладывают под них яйца куриные, цесариные, фазаньи.

инкубация мускусных уток
Режим вывода в пенопласте, Для ТГБ тоже используют эти режимы.

Результат инкубации зависит от качества яиц, правильного и надежного функционирования инкубатора, обращения с яйцами до и во время инкубации, гигиенических условий в инкубаторе.
Режимы инкубации также зависят от модели вашего инкубатора.

В плоскоящечных ( например, Би) он один.




В автоматизированных лоточных(например, ТГБ) режим иной.


Это необходимо учитывать. Постепенно я буду выкладывать все режимы инкубации в теме.

Существуют по сути дела три разновидности инкубаторов ТГБ, если не считать различный набор функций, которыми комплектуется каждая из них по желанию покупателя.

ТГБ 140 (вместимостью 140 куриных яйц)


ТГБ 210 (вместимостью 210 куриных яйц)


и ТГБ 280 (вместимостью 280 куриных яйц)


Желательно увидеть рассказы пользователей о своих моделях ТГБ, их слабые стороны, и наоборот их достоинства!


При не достаточности ТГБ 210 быстренько доделываем его до ТГБ280. Чехол и шасси у них одинаковые, нет только 4го лотка и верхней рамки на поворотную каретку.

Имеем ТГБ210А и запасной лоток (лоток отдельно не стал фотографировать, его можно сделать и самому, но надо найти нужную сетку, согнуть, найти сеточку капроновую вовнутрь. Или просто заказать за 400 руб)

Главная задача сделать рамку не ржавеющей!



Используем снятый транспортный крепеж (с учетом того, что Вы его не выкинули).



Гнём из него уголки и размечаем отверстия, по имеющимся на шасси поворотной каретки с лотками, под крепление штатной рамки. (я еще отрезал от каждой пластинки крепежа по 3,5 см для последующего крепления сетки верхней).



Берем два старых шампура из не ржавеющей полосы, распрямляем, и гнем П-образные полки для рамки





Снимаем уголки крепления сетки, они пойдут в рамку, и на них будет крепиться сетка, в те же отверстия, тем же крепежом, с помощью отрезанных ранее полосок



Разметив и просверлив необходимые отверстия собираем рамку.



Поднимаем раскрепленную решетку, вставляем рамку и крепим её в штатные отверстия.





Прикрепляем решетку обрезанными полосками от транспортного крепежа.



Получаем ТГБ280А, по цене ТГБ210А + 2 старых шампура и дополнительный лоток.





При наличии в семье сварщика варящего нержавейку, всё гораздо проще.
А при его отсутствии – подбираем сверла и несколько винтиков с гаечками.

3 день


4 день


5 день


6 день


7 день


8 день


9 день


10 день


11 день


12 день


13 день


14 день


15 день


16 день


17 день


18 день


19 день


20 день


21 день

H. R. Wilson (Перевод на русский Тагирова М.Т.)

Введение
Когда возникает проблема с выводимостью яиц, обычно ее можно характеризовать как проблему инкубатора, или проблему обращения с яйцом, или же, как проблему родительского стада. Если проблема исходит из родительского стада, вероятно, она имела место, по крайней мере, 4 недели назад, учитывая 3 недели на инкубацию и одну неделю на хранение яиц. Эта задержка в определении проблемы обходится дорого и даже приводит к невозможности определения настоящей причины, если действие было кратковременным. Необходимо определить проблему насколько можно раньше, просвечивая яйца после каждой недели инкубации, постоянно проведя мониторинг отходов инкубации, чтобы как можно раньше предпринимать корректирующие действия. На основе анализа отходов инкубации нельзя поставить окончательный диагноз; однако это является полезным инструментом для определения наиболее вероятных областей для дальнейшей проверки.

Очень важно , чтобы персонал инкубатория, яйцесклада и племенной фермы работали как одна команда для производства высококачественных цыплят и своевременного выявления проблем, когда они возникают. Точные и полные записи продуктивных качеств племенного стада (включая производство яиц, падеж, заболеваемость, вес яиц, качество скорлупы, выводимость, поедаемость корма и титры антител) и судьба яиц на этапе от отложения несушкой до конца инкубации очень важны для выявления большинства проблем с выводимостью яиц. Персонал должен быть подготовлен для узнавания проблем, выявления причин и принятия соответствующих мер.

Целью следующего обзора является подсказка возможных причин и корректирующих мер для некоторых признаков болезней, наблюдаемых при низкой выводимости яиц.

Общие рассуждения
Величина проявления эффектов отклонений от рекомендуемых условий инкубации (температура, влажность, частота поворотов, вентиляция, ориентация яиц) является функцией степени воздействия этого отклонения, продолжительности воздействия отклонения, и возраста эмбриона в это время. Проявление отклонений и возраст эмбриона, при котором наблюдаются пики смертности из-за кормовых факторов, обычно зависит от степени воздействия дефицита питательного вещества, как долго существует этот дефицит, и как долго племенное стадо получает нормальный корм после дефицита. Следовательно, уровень истощения, уровень пресыщения, эффективность отложения яиц, вмешательство со стороны подавляющих факторов и время формирования желтка являются факторами, связанными с эмбриональными отклонениями и смертностью.

Диагностика отклонений: Общие проблемы

1. Признак: Яйца на просвет чистые; в разбитом яйце на желтке видно небольшое белое пятнышко-зародышевый диск; никаких следов крови. Неоплодотворенные.

Причины:
1. Незрелые самцы. Самцов, возможно, следует стимулировать светом на 2 недели раньше чем самок.
2. Самцы с ненормальной спермой; самки с ненормальными яйцами (зародышевый диск). Часто это имеет место, когда производители слишком молодые или слишком старые.
3. Слишком мало самцов, что приводит к редким спариваниям; слишком много самцов, что приводит к дракам и подавлению друг друга. Для легких кроссов предлагается соотношение от 1:12 до 1:15 и для тяжелых- от 1:10 до 1:12.
4. Экстремальные условия погоды.
5. Старые производители. Подкрепление молодыми самцами может решить проблему.
6. Болезнь племенного стада. На это обычно указывают яйца с грубой поверхностью, неправильной формы и тонкоскорлупные яйца.
7. Излишек массы тела, особенно у самцов-производителей бройлеров (>4,800 g, 10.6 lb).
8. Дефицит или избыток кормовых факторов; постоянная нехватка корма.
9. Проблемы с лапами и ногами, особенно у самцов тяжелых кроссов.
10. Некоторые лекарства, пестициды, химические вещества, токсины, микотоксины.
11. Паразиты, такие как клещи.
12. Пол птичника не соответствует требованиям.
13. Низкая частота спариваний, или отсутствие спариваний, часто наблюдается во многих перечисленных выше случаях; это может быть часто непосредственной причиной неоплода.
14. Нерегулированное освещение (интенсивность или продолжительность светлого периода).
15. Неправильно проведенные процедуры по искусственному осеменению.

2. Признак: Яйца на просвет светлые; в разбитом яйце на желтке виден расширенный зародышевый диск; никаких следов крови. Оплодотворенные. Некоторые называют "бластодерма без эмбриона."

Причины:
1. Яйца хранились слишком долго. Они должны храниться <7 дней.
2. Яйца хранились при плохих условиях, температура слишком высокая или слишком низкая. Резкие перепады температур. Температура должна быть от 15.6° до 18.3°C.
3. Неправильное обеззараживание яиц – слишком жесткое или проведено между 12 и 96 часами инкубации. Неправильное опрыскивание или погружение яиц в дезинфектант.
4. Яйца повреждены в ходе сбора и транспортировки, температурный шок (температура повышалась или понижалась слишком быстро), и.т.д.
5. Заклеена скорлупа – подавлен воздухообмен.
6. Высокая температура на ранних этапах инкубации.
7. Слишком молодые или слишком старые производители.
8. Наследственность, инбридинг, хромосомные отклонения или партеногенез.
9. Болезнь племенного стада.
10. Ненормальное развитие основного системного органа.
11. Слишком высокая температура мытья яиц.
12. Инфекции яиц (т.к., сальмонелла).
13. Лекарства, токсины, пестициды, и.т.д.
14. Нечастый или неполный сбор яиц.

3. Признак: Яйца на просвет светлые; в разбитом яйце на желтке видно кровяное пятно или небольшой эмбрион, который погиб до 3 суток инкубации; глаза не видны.

Причины:
1. Яйца хранились слишком долго или при неподходящих температурах.
2. Неправильное обеззараживание яиц – очень жесткие условия или проведена между 12 и 96 часами инкубации.
3. Высокая температура в начале инкубации.
4. Низкая температура в начале инкубации.
5. Яйца повреждены при транспортировке, и.т.д.
6. Болезнь племенного стада.
7. Старое стадо.
8. Нарушение эмбрионального развития.
9. Инбридинг, хромосомные отклонения.
10. Жесткий дефицит некоторых питательных веществ, таких как биотин, витамин А, медь, витамин Е, бор или пантотеновая кислота.
11. Часто связан с высоким уровнем неоплодотворенности яиц.
12. Лекарства, токсины или пестициды.
13. Заражение.
14. Эмбрионы менее развиты при отложении, т.е. стадии предэндодермы или ранней эндодермы.

4. Признак: Мертвые эмбрионы; от 3 до 6 дней инкубации; есть кровеносная система желточного мешка, эмбрион на левой стороне, нет признаков яйцевого зуба

Причины:
1. Посмотреть причины 3.1-14
2. Отсутствие вентиляции, или заклеенная скорлупа, углекислый газ >1%.
3. Неправильные повороты -- <1/час или >6/час; неправильный угол поворота.
4. Дефицит витаминов -- витамин E, рибофлавин, биотин, пантотеновая кислота, или линоленовая кислота.

5. Признак: Мертвые эмбрионы; от 7 до 17 дней инкубации; каждый эмбрион имеет яйцевой зуб, ногти на пальцах, фоликулы пера (8 дней), перья (11 дней).

Причины:
1. Неправильная температура инкубатора, влажность, повороты, вентиляция. Низкая влажность повышает отклонения дуги аорты (13 дней).
2. Инфекция.
3. Дефицит питательных веществ -- рибофлавин, витамин B12, биотин, ниацин, пиридоксин, пантотеновая кислота, фосфор, бор, или линоленовая кислота.
4. Летальные гены (описаны >30).

6. Признак: Мертвые эмбрионы; >18 дней инкубации;

Причины:
1. Неправильная температура инкубации, влажность, повороты, вентиляция.
2. Неправильная температура выводного шкафа, влажность, вентиляция.
3. Контаминация, особенно плесневыми грибами (aspergillis, и.т.д.).
4. Слишком жесткая или продолжительная дезинфекция яиц.
5. Яйца охлаждались при переносе, или переносились на вывод слишком поздно.
6. Разбитая скорлупа – до-, во время инкубации или при переносе на вывод.
7. Дефицит питательных веществ – витамин D, витамин A, фолиевая кислота, или пантотеновая кислота, рибофлавин, витамин E, селен, витамин K, биотин, тиамин, витамин B12, кальций, фосфор, магний, или линоленовая кислота.
8. Неправильное расположение эмбриона; эмбрион неспособен занять нужное положение для вывода.
9. Ненормальное эмбриональное развитие. Неспособность перейти на легочное дыхание и переключиться на внутреннюю кровеносную систему, и/или неспособность втягивания кишечных петель и желточного мешка. Эти и другие изменения имеют критическое значение в это время.
10. Наследственность – летальные гены, хромосомные отклонения.
11. Близнецы.
12. Выводной шкаф открывается слишком часто во время вывода.
13. Слабая скорлупа.
14. Болезни плем-стада.

Диагностика: Специфические проблемы

1. Признак: Нет проклева. Полновозрастный эмбрион, большой желточный мешок; желточный мешок не полностью охватывается брюшной стенкой, может иметь остаточный белок.

Причины:
1. Неадекватные повороты, приводящие к слабому развитию эмбриональных мембран и всасыванию питательных веществ.
2. Слишком высокая влажность в ходе инкубации или после переноса на вывод.
3. Низкая температура инкубатора.
4. Слишком высокая температура в выводном шкафу.
5. Яйца охлаждались ( при переносе на вывод).
6. Дефицит питательных веществ.
7. Наследственность.
8. Нарушение эмбрионального развития.
9. Болезнь племстада.
10. Неадекватная вентиляция.
11. Продолжительное хранение яиц.

2. Признак: Есть проклев. Полновозрастный эмбрион, погиб в скорлупе.

Причины:
1. Низкая влажность или температура в течение длительного периода.
2. Низкая влажность в ходе вывода.
3. Высокая температура на выводе.
4. Дефицит питательных веществ.
5. Болезнь племстада.
6. Слабая вентиляция.
7. Неадекватные повороты первые 12 дней.
8. Повреждения при переносе на вывод.
9. Продолжительное хранение яиц.

3. Признак: Скорлупа частично пробита, эмбрион живой или мертвый.

Причины:
1. Посмотреть 8.a-i.
2. Избыток обеззараживания (обкуривания) в ходе вывода.
3. Яйца расположены острым концом вверх.

4. Признак: Цыплята вылупляются рано; обычно худые и постоянно пищат.

Причины:
1. Маленькие яйца.
2. Большие различия в племстаде.
3. Температура инкубатора слишком высокая.
4. Слишком низкая влажность инкубатора.

5. Признак: Цыплята вылупляются поздно.

Причины:
1. Большие яйца.
2. Старые несушки.
3. Долго хранились яйца (40 мин. увеличение времени инкубации/день хранения, от 0.5% до 1.2% снижение количества вылупившихся цыплят/день хранения).
4. Низкая температура инкубации.
5. Слабые эмбрионы.
6. Инбридинг.
7. Высокая влажность в инкубаторе.

6. Признак: Медленный, затяжной вывод.

Причины:
1. Смешивание в инкубаторе яиц, хранившихся разные периоды времени (1.2% потери вывода/день хранения, когда все яйца заложены одновременно; только 0.5% потерь/день, когда яйца, хранившиеся дольше, заложены раньше, чтобы дать им больше инкубационного времени).
2. Смешивание яиц от молодых и старых несушек.
3. Смешивание больших и маленьких яиц.
4. Неправильная сортировка яиц.
5. Горячие или холодные участки в инкубаторе или выводном шкафу.
6. Температура инкубатора или выводного шкафа высокая или низкая.
7. Неправильная система вентиляции помещения; высокое положительное давление или низкое отрицательное давление. Такие давления могут изменить вентиляцию инкубатора или выводного шкафа.

7. Признак: Неоднородное качество цыплят.

Причины:
1. Смешивание больших и маленьких яиц.
2. Смешивание яиц от молодых и старых несушек.
3. Смешивание яиц от разных пород и линий.
4. Некоторые яйца хранились очень долго.
5. Отсутствие однородной вентилляции в инкубаторе или выводном шкафу.
6. Болезнь или другой стресс а одном или нескольких стадах.
7. Различия в условиях хранения яиц в разных стадах.

8. Признак: Липкие цыплята; цыплята замазаны белком.

Причины:
1. Низкая температура инкубации.
2. Высокая влажность в инкубаторе.
3. Неадекватные повороты. Это приводит к пониженному росту эмбриональных мембран и пониженному поглощению питательных веществ.
4. Старые яйца.
5. Очень большие яйца.

9. Признак: Цыплята приклеены к скорлупе,сухие; цыплята с кусочками скорлупы, приклеенными к пуху.

Причины:
1. Низкая влажность во время хранения, инкубации и вывода.
2. Неадекватные повороты.
3. Разбитые яйца или плохое качество скорлупы.

10. Признак: Преждевременный вывод; кровавый пупок.

Причины:
1. Температура инкубатора и/или выводного шкафа слишком высокая.

11. Признак: Маленькие цыплята.

Причины:
1. Маленькие яйца.
2. Низкая влажность в ходе хранения и/или инкубации.
3. Высокая температура инкубации.
4. Большая высота над уровнем моря. В выводных шкафах на больших высотах (>1,500 m or 4,920 ft) необходимо создать низкий уровень влажности, углекислого газа и кислорода. Атмосферное давление <600 mmHg (~1,830 m or 6,004 ft) снижает рост и метаболическую скорость, увеличивает потерю воды из яиц.
5. Тонкая, пористая скорлупа.

12. Признак: Невтянутый пупок; перья сухие, с грубым пушком.

Причины:
1. Высокая температура инкубации или большие перепады температуры.
2. Низкая температура в выводном шкафу.
3. Высокая влажность в выводном.
4. Неадекватное кормление несушек.

13. Признак: Нездоровый пупок, мокрый, вонючий; большие, мягкотелые и вялые цыплята.

Причины:
1. Омфалит (инфекция пупка). Контаминация от грязных лотков, антисанитарии в выводном шкафу, грязных яиц, неадекватная санитария яиц или обеззараживание.
2. Низкая температура инкубатора.
3. Высокая влажность инкубатора или выводного шкафа.
4. Неадекватная вентиляция.

14. Признак: Слабые цыплята.

Причины:
1. Высокая температура инкубатора.
2. Слабая вентиляция в выводном шкафу.
3. Излишнее обеззараживание.
4. Контаминация.

15. Признак: Цыплята занимают неправильное положение. Нормальное положение после 19 дней инкубации: Длинная ось эмбриона совпадает с длинной осью яйца; голова в тупом конце яйца; голова повернута направо и под правым крылом; клюв в направлении воздушной камеры; ноги к голове.

Причины:
1. Яйца расположены острым концом вверх или лежат.
2. Неадекватные или неправильные повороты.
3. Высокая или низкая температура инкубации.
4. Высокая влажность.
5. Старые несушки.
6. Круглые яйца или очень большие яйца.
7. Нехватка питательных веществ, особенно витамина А и витамина B12.
8. Неправильный сбор и хранение яиц.
9. Отсталое развитие.
10. Эмбрионы <18 возраста могут находиться в других позициях.

16. Признак: Уродства.

Причины:
1. Ненадлежащее хранение яиц.
2. Тряска яиц или транспортировка тупым концом вниз.
3. Наследственность.
4. Дефицит питательных веществ, таких как, биотин, рибофлавин, цинк, или магний.
5. Неадекватные повороты.
6. Ненадлежащая ориентация яиц, т.е., острым концом вверх.
7. Высокая или низкая температура инкубации.
8. Болезни племстада.
9. Ненадлежащая вентиляция или скорлупа с малой проницаемостью или пористостью.

17. Признак: Кривые лапы, широко расставленные ноги.

Причины:
1. Высокая или низкая температура инкубатора.
2. Неадекватное кормление.
3. Гладкя поверхность выводных лотков.

18. Признак: Короткий пух, проволочный пух.

Причины:
1. Нехватка питательных веществ, особенно рибофлавина.
2. Микотоксины и другие токсические или ингибирующие вещества, приводящие к дефициту питательных веществ.
3. Высокая температура в течение от 1 до 14 дней инкубации.

19. Признак: Глаза закрыты, пух заклеил глаза.

Причины:
1. высокая температура в выводном шкафу.
2. Низкая влажность в выводном шкафу.
3. Коллекторы пуха неправильно работают.
4. Цыплята остались в выводном шкафу долго после вывода
5. Излишнее движение воздуха в выводном шкафу.

20. Признак: Тумаки (Exploders).

Причины:
1. Грязные яйца из гнезд. Грязные гнезда.
2. Яйца с пола.
3. Неправильно мытые яйца; яйца вытирались или очищались зараженной тряпкой или буфером.
4. Пыль из птични, холодильника, транспорта, и.т.д.
5. Конденсация воды на яйцах (испарина).
6. Вода брызгалась на яйца; яйца погружались в обеззараживающий раствор.
7. Заражение от прежних тумаков,выливок, или разбитых яиц.
8. Заражение яиц вследствие их сбора грязными руками или машиной.
9. Зараженные поверхности, воздушные фильтры, системы для воды (влажности).

21. Признак: Карликовые эмбрионы: отсталые из растущих цыплят.

Причины:
1. Контаминация яиц.
2. Контаминация выводного шкафа, особенно во время вывода.
3. Болезнь племстада.
4. Наследственность.
5. Нехватка питательных веществ.
6. Отклонения в секреции тироидных гормонов.

22. Признак: Перекрешенный клюв, раздвоенный клюв.

Причины:
1. Наследственность.

23. Признак: Отсутствие глаз(а), другой глаз ненормальный.

Причины:
1. Высокая температура инкубатора первые 1 - 6 дней.
2. Низкий уровень кислорода в ходе 1 - 6 дней.

24. Признак: Открытый головной мозг.

Причины:
1. высокая температура в первые 1 - 3 дня инкубации.
2. Низкий уровень кислорода в ходе 1 - 3 дня инкубации.

25. Признак: Красные скакательные суставы у вылупившихся цыплят или невылупившихся эмбрионов.

Причины:
1. Продолжительное нахождение в скорлупе в ходе вывода.
2. Нехватка витаминов.
3. Толстая скорлупа, как у молодок.
4. Высокая влажность инкубатора и/или низкая температура.

26. Признак: Маленькая воздушная камера, подскорлупная мембрана неполностью срезана, красные скакательные суставы, отечные цыплята, непоглошенный белок, желток неполностью втянут, потеря массы яйца <10%.

Причины:
1. Высокая влажность в инкубаторе.
2. Очень толстая скорлупа, как у молодок.
3. Низкая температура в инкубаторе.

27. Признак: Микромелия (укороченные кости конечностей, клюв попугая, кривые кости); хондродистрофия (схожая с микромелией).

Причины:
1. Наследственность, летальные гены.
2. Дефицит питательных веществ (биотин или марганец).

28. Признак: Укороченный клюв, отсутствие клюва, уродства лица.

Причины:
1. Температура в инкубаторе слишком высокая в первые 1-5 дней.
2. Наследственность, летальные гены.
3. Отклонения развития эмбриона.
4. Дефицит питательных веществ (ниацин).

29. Признак: Открытые (еctopic) внутренности.

Причины:
1. Температура в инкубаторе слишком высокая.
2. Наследственность, летальные гены.

30. Признак: Кровоизлияние.

Причины:
1. Красная кожа -- температура в инкубаторе, или в выводном шкафу слишком высокая.
2. Кровоточит хориоаллантоис -- грубое обращение при переносе на вывод.
3. Дефицит питательных веществ (витамин K или витамин E).
4. Эмбрионы, которые погибли на 11-15 сутки и на вид меньше своего возраста и темно-красные -- обычно заражены плесенью или другими контаминантами.

31. Признак: Вздутая голова и бок шеи (эксудативный диатез - повышенная капиллярная проницаемость).

Причины:
1. Дефицит питательных веществ (витамин E или селен).

Дефицит питательных веществ и Токсичность; Почти всегда проблема племенного стада

1. Витамин A: Отклонения в развитии кровеносной системы; уродства скелета, особенно черепа и позвоночного хребта; дегенеративные изменения в головном и спинном мозге и нервах; эмбриональная смертность наступает рано (первые 2 – 3 дня инкубации). У вылупившихся цыплят может наблюдаться водянистые выделения из глаз или слипшиеся веки. Большой избыток витамина A также может привести к отклонениям скелета.

2. Витамин D: Поздняя эмбриональная смертность (>17 дней); задержка роста; слабое развитие скелета; рахит.

3. Витамин E: Проблемы с кровеносной системой, экссудативный диатез, кровоизлияния, задержка роста, энцефаломаляция, отклонения развития глаз (мутный или кровяной зрачок), отек шеи и лап; пики эмбриональной смертности 2-5 дни инкубации. Слабость мускулатуры после вывода.

4. Витамин K: Кровоизлияния на эмбрионе и мембранах, особенно перед и при выводе.

5. Тиамин: Полиневрит; пик ранней смертности или поздний пик =>19 дней; много мертвых эмбрионов в выводных лотках.

6. Рибофлавин: Задержка роста, короткие ноги, дезорганизация кровеносной системы, отек, булавовидный пух, завитые пальцы ног, микромелия (малые размеры конечностей), анемия, коричневая или темно-зеленая печень; пики смертности на 3 - 5, 10 - 15, и 21 - 22. Пики смертности меняются от позднего до раннего периода инкубации в зависимости от того как долго родительское стадо было лишено рибофлавина.

7. Ниацин: Гипоплазия (пониженный рост и развитие) скелетных мышц, отек, укороченный верхний клюв, отклонения нервной и кровеносной систем. Пики смертности на 8-14 дни инкубации.

8. Витамин B6 (пиридоксин): Подавление раннего эмбрионального роста; пики смертности на 8 – 14 дни.

9. Пантотеновая кислота: Подкожные кровоизлияния, отеки, гидроцефалия, водянка головного мозга, слабое оперение, спиралевидные ного, жирная печень, тусклые глаза, бледное, отсталое в развитии сердце; пики смертности: 2 - 4 и 11 – 15 дни.

10. Биотин: Хондродистрофия и микромелия (деформированный скелет, укороченные длинные костs, клюв попугая), синдактилизм (перепонка между пальцами); кровоизлияния на эмбрионе и хориоаллантоисе; пики эмбриональной смертности: 3 - 4 и =>17 дней. Ранний пик смертности наибольший при жестком дефиците, в то время как поздний пик наибольший при средней тяжести дефиците.

11. Фолевая кислота: Искривленная большая берцовая кость, синдактилизм (сращение пальцев), сплюшенная голова, маленькие глаза, открытые внутренности, клюв попугая, другие дефекты клюва, задержка роста; пик эмбриональной смертности >17 дней.

12. Витамин B12: Отек (особенно около глаз), кровоизлияния, завитые пальцы, короткий клюв, слабое развитие мускулатуры ног, карликовость, жирная печень, увеличенная enlarged щитовидка , отсталое, неправильной формы сердце, неправильная позиция: голова между бедер; пики эмбриональной смертности: 8 - 14 (маленький пик) и 16 – 18 дней.

13. Марганец: Хондродистрофия, деформированный скелет, укороченные длинные кости, клюв попугая, микромелия, отек, ненормальные пуховые перья; пик эмбриональной смертности >18 дней. У цыплят нарушена координация движений.

14. Цинк: Дефекты скелета, особенно в задней части позвоночного столба (наиболее свойственный дефект- взъерошенность), маленькие глаза, открытые внутренности, отклонения клюва и головы, отеки. Слабые цыплята; не могут стать, есть или пить. Эмбриональная смертность может быть очень высокой.

15. Кальций: Больше влияет через плохое качество скорлупы, потерю массы яиц, и увеличенную контаминацию. Задержка роста, слабое развитие костей, и смертность увеличивается на позлних стадиях развития. Большой излишек кальция также может вызвать эмбриональные отклонения.

16. Магний: Нервный тремор, затрудненное дыхание, и конвульсии при выводе.

17. Фосфор: Ненормальное формирование костей, задержка роста; пик смертности: 14 – 16 дней.

18. Медь: Дефекты крови и кровеносной системы. Пики смертности: <3.

19. Йод: Подавляет активность щитовидной железы. Дефицит или излишек вызывает увеличение времени инкубации, пониженный рост, и увеличенная смертность. Щитовидка может быть увеличена.

20. Селен: Экссудативный диатез. Высокие дозы селена токсичны: отек головы и шеи, проволочные ноги, некрозы на головном и спинном мозгу, укороченный верхний клюв, отсутствие глаз, выступающие глаза, увеличивается число эмбрионов, занимающих неправильную позицию.

21. Mолибден: >17 ppm в яйце приводит к 100% смертности к 12 дням инкубации.

22. Литий: Избыток вызывает эмбриональную смертность связанную подавлением развития, дефектами глаз, расширением аорты, ненормальной нервной трубкой.

23. Бор: Избыток бора в яйце (44 ppm) вызывает смертность эмбрионов на ранних этапах развития и к 13 дням. Наблюдаются отклонения схожие с таковыми как при дефиците рибофлавина. Отклонения лица, клюва, и аппендикулярного скелета.

24. Протеин, аминокислоты: Дефицит, избыток, или дисбаланс некоторых аминокислот могут вызвать отклонения и смерть. отклонения включают маленький или ненормальный верхний и/или нижний клюв, неорганизованные выступы в головном мозгу, открытые внутренности, скрученные и укороченные конечнгости, кривой хребет, короткое тело, дегенерация глаз.

25. Жир, жирные кислоты: Дефицит линолевой кислоты: медленное развитие, 75% эмбрионов занимают неправильную позицию голова поверх правого крыла; пики смертности 1 - 4, 8 - 14, и >21. Перенос липидов из желтка в эмбрион понижена в первых нескольких яйцах отложенных молодками; это приводит к повышенной эмбриональной смертности.

26. Разнообразные вещества:

1. Тетрациклин: Подавление минерализации скелета, эрозия хряща длинных костей, отклонения скелета.

2. Сульфониламиды:Отсталый рост, укороченные длинные кости, extreme micromelia, клюв попугая, взъерошенность.

3. Пенициллин:Отек и кровоизлияния в крыльях, ногах, и голове.

4. Афлатоксин B1:Задержка роста (начиная с 12 суток), маленькая печенка, высокая смертность.

5. Аммиак (в инкубаторах): Незамкнутая нервная трубка, смертность.

27. Микроорганизмы:

1. Инфекционный бронхит: Задержка роста, отставание развития легких, маленькое сердце, увеличенная селезенка.

2. Болезнь Ньюкастла: Пониженный рост, маленький амнион, отклонения в нервной и сенсорной тканях в раннем эмбрионе.

3. Ботулизм: Атрофия мускулатуры, жировые отложения, общие проблемы, укороченный верхний клюв.

4. Стафилококк: Общирные кровоизлияния и разрушение тканей.

5. Стрептококк:Разрушение синовиальной выстилки суставов.

6. E. coli: Гнили.

7. Аспергиллез: Черные или темно зеленые гнили. Эмбрион красный или темный, карликовый.

8. S. pullorum, S. gallinarum, and S. typhimurium: Передается через яйцо. Эмбриональный сепсис (гнилокровие), высокая эмбриональная смертность, высокая смертность цыплят.

Этапы эмбрионального развития
До овуляции:

Овуляция -- Первое мейотическое деленеие оогенеза.

30 мин. После овуляции – Второе мейотическое деление и оплодотворение.

4 часа после овуляции – Первое деление дробления.

4.3 часа после овуляции – Второе деление дробления.

5.5 часа после овуляции – Третье деление дробления.

6.3 часа после овуляции – четвертое деление дробления.

6.4 до около 25.5 часов после овуляции (откладка яйца) -- Продолжается деление и рост; клетки обособляются в группы по определенным функциям. Около 40 тыс. клеток при откладке яйца.

Между откладкой и инкубацией -- Нет роста; эмбрион неактивен (если эмбрион находился при температуре ниже 25.5°C, который является физиологическим нулем); нормальная температура хранения от 13° до 18°C.

В ходе инкубации:

Сутки 1:

6 до 10 часов – Первые почкообразные клетки (предпочка) начинают формироваться

8 часов –Появление примитивной полоски.

10 часов –Желточный мешок (эмбриональная мембрана) начинает формироваться. Функции: a) формирование крови; b) переваривание желтка; c) поглощение желтка; d) роль пищи после вылупления. Появляется мезодерма; эмбрион ориентируется под углом 90° к длинной оси яйца; начинается формирование первичной почки (mesonephros).

18 h –Начинается формирование первичной кишки; в зародышевом полумесяце появляются первичные зародышевые клетки.

20 часов –Начинает формироваться позвоночный хребет.

21 часов –Начинает формироваться нервная бороздка, нервная система.

22 часов –Начинают формироваться первые пары сомитов и голова.

23 до 24 часов –Начинают формироваться островки крови, кровеносная система желточного мешки, кровь, сердце, кровяные сосуды (2 до 4 сомитов).

Сутки 2:

25 часов –появление глаз; виден позвоночный столб; эмбрион начинает поворачиваться на левый бок (6 сомитов).

28 часов –ушные раковины (7 сомитов).

30 часов -Амнион (эмбриональная мембрана вокруг эмбриона) начинает формироваться. Первичная функция - защита эмбриона от шока и прилипания, также ответственен, в некоторой степени, за поглощение белка. Хоион (эмбриональная мембрана, которая сливается с аллантоисом) начинает формироваться; начинается сердцебиение (10 сомитов).

38 часов –Среднемозговой изгиб и изгиб эмбриона; начинается сердцебиение, кровь (16 до 17 сомитов).

42 часов –Начинает формироваться щитовидка.

48 часов –Начинают развиваться передний гипофиз и и шишковидная железа.

Сутки 3:

50 часов –Эмбрион поворачивается на правый бок; начинает формироваться аллантоис (эмбриональная мембрана, которая сливается с хорионом). Функции хориоаллантоиса: a) дыхание; b) поглощение белка; c) поглощение кальция из скорлупы; d) хранение выделений почек.

60 часов –Носовые углубления, глотка, легкие, начинают формироваться почки передних конечностей.

62 часов - начинают формироваться почки задних.

72 часов –Среднее и внешнее ухо, начинается трахея; завершается рост амниона вокруг эмбриона.

Сутки 4: Начинает формироваться язык и пищевод (esophagus); эмбрион отделяется от желточного мешка; Аллантоис растет сквозь амнион; стенка амниона начинает сокращаться; начинают развиваться надпочечники; предпочка (pronephros) (нефункционирующая почка) исчезает; Вторичная почка (metanephros, definitive or final kidney) начинает формироваться; железистый желудок (proventriculus), второй желудок (gizzard), слепой вырост кишечника (ceca), толстая кишка (large intestine) начинают формироваться. В глазах виден темный пигмент.

Сутки 5: Формируется репродуктивная система и дифференциация пола; Тимус (thymus), Фабрициева сумка (bursa of Fabricius), петля двенадцатиперстной кишки (duodenal loop) начинают формироваться; начинают сливаться хорион и аллантоис; мезонефрос начинает функционировать; первый хрящ.

Сутки 6: Появляется клюв; начинаются произвольные движения; хориоаллантоис лежит напротив скорлупы тупого конца яйца.

Сутки 7:Появляются пальцы; начинается рост гребня; яйцевой зуб появляется; продуцируется меланин, начинается поглощение минеральных веществ из скорлупы. Хориоаллантоис прилипает к внутренней подскорлупной мембране и растет.

Сутки 8: Появление перьевых фолликулов; околощитовидная железа (parathyroid) начинает формироваться; кальцификация костей.

Сутки 9: Рост хориоаллантоиса завершен на 80%; клюв начинает открываться.

Сутки 10: Клюв затвердевает; пальцы полностью разделены друг от друга.

Сутки 11: Устанавливаются брюшные стенки; петли кишки начинают вдаваться желточный мешок; видны пуховые перья; На лапках появляются чешуя и перья; мезонефрос достигает максимума функциональности, затем начинает дегенерировать; метанефрос (вторичная почка) начинает функционировать.

Сутки 12: Хориоаллантоис завершает охватывание содершимого яйца; Содержание воды в эмбрионе начинает уменьшаться.

Сутки 13: Хрящевой скелет сравнительно завершен, эмбрион увеличивает продукцию тепла и потребление кислорода.

Сутки 14: Эмбрион начинает поворачивать голову в сторону тупого конца яйца; убыстряется кальцификация длинных костей. Повороты яиц дальше не имеют значения.

Сутки 15: Петли кишки легко видны в желточном мешке; сокращения амниона прекращаются.

Сутки 16: Клюв, когти и чешуя сравнительно ороговели; белок практически использован и желток становится источником питания; пуховые перья покрывают тело; петли кишки начинают втягиваться вовнутрь тела.

Сутки 17: Уменьшается количество амниотической жидкости; расположение эмбриона: голова в сторону тупого конца, в сторону правого крыла и клюв в сторону воздушной камеры; начинают формироваться дефинитивные перья.

Сутки 18: Объем крови уменьшается, общий гемоглобин уменьшается. Эмбрион должен быть в правильной позиции для вывода: длинная ось эмбриона совпадает с длинной осью яйца; голова в тупом конце яйца; голова повернута направо и под правым крылом; клюв направлен в сторону воздушной камеры; ноги направлены к голове.

Сутки 19:Втягивание петли кишки завершается; желточный мешок начинает втягиваться в полость тела; амниотическая жидкость (проглоченная эмбрионом) исчезает; клюв может пробить воздушную камеру и легкие начинают функционировать (легочное дыхание).

Сутки 20: Желточный мешок полностью втянут в полость тела; воздушная камера пробита клювом, эмбрион издает писк; Кровеносная система, дыхание и абсорбция хориоаллантоиса уменьшается; эмбрион может проклюнуться.

Сутки 21: Процесс вывода: прекращается кровеносная система хориоаллантоиса; эмбрион пробивает скорлупу на тупом конце яйца с помощью яйцевого зуба; эмбрион медленно поворачивается с яйце против часовой стрелки, пробивая скорлупу; эмбрион толкается и пытается выпрямить шею, выходит из яйца, освобождается от остатков и сушится.

> Сутки 21: Некоторые эмбрионы неспособны вылупиться и остаются живыми в яйце после 21 суток.

Стадии развития других видов птиц можно оценить путем сравнения с развитием куриного зародыша на основе процента времени инкубации.

Анализ инкубируемых яиц
Анализ инкубируемых яиц должен быть сделан для оценки состояния оплодотворенности и выводимости яиц племстада. Это очень важный диагностический инструмент для установления причин и проблем выводимости яиц. Существует три типа анализа: (1) анализ свежих, неинкубированных яиц; (2) просвечивание инкубируемых яиц на 5 до 12 сутки, анализ неживых эмбрионов, и регистрация яиц поставленных острым концом вверх; и (3) анализ отходов инкубации.

Анализ свежих яиц проводится чтобы дать непосредственную оценку оплодотворенности яиц и чтобы подтвердить оплодотворенность яиц после анализа первого миража. Первый мираж включает яйца, определенные как нефертильные, яйца, содержащие мертьвые эмбрионы и разбитые яйца. Анализ отходов инкубации включает все невылупившиеся яйца. Регулярные анализы помогут выяснить состояние стада и диагностировать проблемы с выводимостью яиц, минимизировать потери, и сравнивать породы, стада, фермы, инкубационные шкафы и другие параметры.

Отбор яиц и размер выборки важны для получения достоверных данных. Отбор яиц должен проводиться чтобы включить яйца из репрезентативных участков в инкубаторе и выводном шкафу. Предлагаются следующие варианты минимального размера: (1) 10 невылупившихся яиц из 5 выводных лотков; (2) все невылупившиеся яйца из 4 лотков на инкубатор или выводной шкаф; (3) все невылупившиеся яйца из 1,000 заложенных яиц; также могут быть и другие варианты.

Записи должны включать, но не ограничиваться следующими переменными: Стадо, порода, ферма, дата закладки, использованные инкубаторы, расположение яиц в инкубаторе, количество, заложенных яиц, количество оплода, количество раннего отхода (0 до 7 суток), средний отход (8 до 14) , поздний отход ( 15 суток и больше), возраст каждого эмбриона, расположение (эмбрионы 19 суток и старше), количество проклюнувшихся, уродства, количество зараженных эмбрионов (гнили), Разбитые яйца (во время транспортировки и.т.д.), необычные яйца (размер, форма, качество скорлупы, чистота яиц), количество мертвых цыплят и брака, и количество живых цыплят.

Яйца должны быть извлечены из лотков и идентифицированы по стаду, расположению и.т.д. Яйца оцениваются сначала по внешним признакам, проклеву, и расположению воздушной камеры. Скорлупа разбивается на тупом конце, проделывается отверстие для изучения внутреннего содержимого. Если яйцо оказывается неоплодом или погиб на ранних стадиях, ищется зародышевый диск для окончательной диагностики неоплода. Если эмбрион маленький, его вытягивают на чашку для дальнейшего анализа. Поздние эмбрионы должны быть обследованы на проклев воздушной камеры, затем яйцо вскрывается ножницами от тупого конца к острому, не нарушая расположения эмбриона. Регистрируются положение, возраст эмбриона, уродства, заражение, и другие факторы.

Литература
Abbott, U. K. 1975. Identifying causes of problems in hatchability. Poultry Digest (November): 446-47.

Anonymous. 1971. Incubation trouble shooting. Denver: Robbins Incubator Company.

Anonymous. 1991. Hatchery trouble shooting guide. Glastonbury, Conn.: Arbor Acres, Inc.

Coleman, M. A. 1986. Solving hatchability problems. Poultry International (December): 12-15.

Hodgetts, B. 1988. Why do your embryos die? Internat. Hatchery Practice 2 (3): 4, 5, 7, 9.

Hodgetts, B. Solving hatchability problems. Information for flock farms and hatcheries. ADAS Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. Wolverhampton, UK.

Landauer, W. 1967. The hatchability of chicken eggs as influenced by environment and heredity. Monograph I (Revised). Storrs Agricultural Experiment Station, Conn.

McDaniel, G. R. 1990. Hatchability: Many factors affect results. Poultry Digest 49 (9): 20, 22, 24, 28, 30.

North, M. O., and D. D. Bell. 1990. Commercial chicken production manual, 103-34. New York: Van Nostrand Reinhold.

Patten, B. M. 1964. Foundations of embryology. 2d ed. New York: McGraw-Hill, Inc.

Romanoff, A. L. 1960. The avian embryo. New York: The MacMillan Company.

Romanoff, A. L., and A. J. Romanoff. 1972. Pathogenesis of the avian embryo. New York: Wiley-Interscience.

Summers, J. D., and S. Leeson. 1985. Poultry nutrition handbook, 119-24. University of Guelph, Canada: Department of Animal and Poultry Science.

Tullett, S. G., and R. C. Noble. 1989. Understanding the chick embryo (III). Low hatchability problems in young parent stock. Misset International Poultry (January): 8-9.

Wilson, H. R. 1991. "Physiological requirements of the developing embryo: Temperature and turning." In Avian incubation, ed. S.G. Tullett, 145-56. Developed from Poultry Science Symposium Number Twenty-Tw